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粗毛栓菌漆酶cDNA的PCR扩增+任务书+开题报告 第3页

更新时间:2011-5-1:  来源:毕业论文
粗毛栓菌漆酶cDNA的PCR扩增+任务书+开题报告 第3页
培养基C:N比为6:1,适于粗毛栓菌中木聚糖酶的培养。按上述比例准确称取各药品置于50mL的小烧杯中,然后用去离子水将这些药品溶解并定容150ml(pH约为6.5),将定容好的培养基溶液均分至两个250mL锥形瓶中,即每瓶50mL。用纱布及塑料纸封好瓶口后放入高压蒸汽灭菌锅中灭菌(121℃、30min),结束后取出锥形瓶放至室温下冷却。
本实验所用菌种是实验室已经培养好的。
1.2  仪器和试剂
1.2.1  仪器
5417-R型Eppendorf 离心机(德国),TU1810紫外可见分光光度计(北京普析通用仪器有限责任公司),DYY-8C型水平电泳仪(北京市辣一仪器厂),DYY-III-31A型水平电泳槽(北京市辣一仪器厂),WFH-201B型紫外透射反射仪(上海精科实业有限公司),干式恒温器(杭州奥盛仪器有限公司),TP600型梯度PCR仪(日本Takara原文请找腾讯752018766辣,文-论~文.网http://www.751com.cn DEPC水(二乙基焦碳酸盐, diethyl pyrocarbonate),1×PBS(在1000 mL 灭菌的去离子水中含8g NaCl,0.2g KCl,1.15g Na2HPO4和0.2g KH2PO4,用盐酸调pH7.4,121℃,灭菌20min), 细胞裂解液{内含CBS(柠檬酸/十二烷基肌氨酸钠/β-巯基乙醇)}, RNA抽提用的Takara试剂盒(日本Takara公司),EDTA;琼脂糖(英国),MOPS{3-(morpholino)propanesulfonic acid};反转录试剂盒(日本Takara公司);PCR扩增试剂盒(日本Takara公司);TEA缓冲液,250bp-DNA-Ladder-Marker(日本Takara公司),NaAc(pH=4)缓冲液。
1.3  准备实验
(1)配1×PBS分装在实际瓶中,不要装满(对于磨砂广口瓶,用双层滤纸片挡住瓶口;对于螺旋瓶盖,可适当松拧几圈)。
(2)用干净毛刷、洗衣粉清洗玻璃研磨器,再用自来水冲洗,最后用去离子水荡洗,带上俩层手套将研钵灌满DEPC,并用聚丙烯膜包扎,浸泡过夜。
(3)将枪头EP管放入烧杯中,加入DEPC,封口浸泡过夜。
(4)用镊子夹住2mL EP管,灌满DEPC,放入烧杯中,浸泡过夜。
(5)带两层手套将研钵中的DEPC倒出,按原样包扎好。用镊子将枪头从DEPC中取出,甩净放入枪头盒中,将EP管取出放入盒中。
(6)将上述用品连同PBS放入灭菌锅中,121℃灭菌30min,于50℃烘箱中烘干。
1.4   总RNA的提取:
使用Chomczynski和Sacchi[6]所提出的酸酚抽提法并略作改动。
(1)将菌丝用纱布过滤出来,用预冷的PBS将培养基等杂质洗净。
(2)取出菌丝体,置于无菌的多层滤纸之间,吸干多余的液体。用灭菌牙签迅速将菌丝体分散并转移大约1g至已经DEPC(二乙基焦碳酸盐, diethyl pyrocarbonate)处理过的20mL玻璃研磨器中,
(3)加入6 mL预冷的RNA抽提变性液[将25g异硫氰酸胍加入35 mL CBS(含0.1 mol/L柠檬酸,pH 4.0, 2%SDS,1%β-巯基乙醇)缓冲液中],研磨,直至研磨液呈均匀的浆液状。
(4)加入1.2 mL 2 mol/L 的NaAc(pH 4.0)溶液,混合均匀。
(5)将研磨液转移至10只用DEPC处理过的聚丙烯离心管(1.5mL)中,
(6)向每只管中加入600µL酚-氯仿混合液(酚∶氯仿∶异戊醇 = 25∶24∶1),混匀,强力振荡(涡旋)20 sec,冰浴20 min,离心(10,000g,4℃,20 min),除去蛋白质。
(7)取出上层水相两管合一管,至另外5只经DEPC处理过的1.5 mL离心管中,加入等体积氯仿混匀离心(10.000g,4℃,15min),除去残留酚。
(8)氯仿向每只管中加入与样品等体积的冰冷的异丙醇,1/10体积的NaAC缓冲液,上下反转几次(混匀),于-20℃放置30 min以上。离心(10,000g,4℃)20 min,弃去上清液,
(9)重复(6)至(8)步骤。
(10)加入75%乙醇20 mL和2mLNaAc缓冲液,漂洗沉淀,再如上法离心,弃去上清液。
(11)室温开盖(覆盖滤纸)干燥10-20 min到乙醇全部挥发,加入2 mL无RNase的ddH2O,待RNA溶解后,取20 μL用于紫外检测RNA的浓度和纯度,另取10μL用于电泳检测RNA的质量。将其余的分装于若干只0.5mL EP管中,于-20℃保存,备用。
1.5  RNA浓度和纯度的测定
1.5.1  RNA纯度测定
取25μL上述总RNA的提取液和2.5mL去离子水,放入石英比色皿中,混匀,分别在260nm和280nm波长下,用分光光度计测量其光吸收值( A260 和A 280),通过计算A260和A 280 的比值,如果RNA样品的纯度=OD260/OD280=1.8至2.0,说明纯度较高。
1.5.2  RNA纯度测定
RNA样品浓度计算公式如下:
总RNA样品的浓度(μg/uL)=OD260 ×核酸稀释的倍数×40/1000

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