粗毛栓菌Mnp的分离与纯化+文献综述 第3页
粗酶液的制备
培养60天后,培养物与过夜预冷的去离子水(4℃)以1:8的比例混合,4h并每隔半小时搅拌一次,然后用中空纤文超滤装置进行超滤浓缩。弃去滤渣,共获取滤液500mL;在粗酶液中添加固体硫酸铵粉末82克,至30%饱和度(每100mL加硫酸铵16.4g),并缓慢搅拌,使硫酸铵完全溶解,于4℃下静置过夜;离心(6000rpm 4℃) 15min,除去沉淀物,留取上清液;将上清液硫酸铵的饱和度上调到75%(每100mL溶液加28.5g粉末状硫酸铵),于4℃下静置过夜;离心(7500rpm 4℃ )20min, 弃去上清液,留取沉淀;用适量的蒸馏水溶解沉淀,将溶解物装入透析袋(12-14KDa)内,对预冷的蒸馏水透析。每隔4h换一次去离子水水,于4℃下透析。
1.4 离子交换层析
用阴离子交换剂Q-Sepharose Fast Flow 装制成一根1.6×20cm柱,连接梯度混合器、恒流泵、核酸-蛋白检测仪和自动部分收集器。
柱的装填:把层析柱固定在架子上,层析柱必须与地面垂直,否则装好的柱床表面倾斜,影响层析分离的效果。装柱时,离子交换剂要分几次加入。如果待第一次离子交换剂在柱中沉淀到十分紧密后,再加入第二批时,两者之间就会产生明显得节痕。在发生上述情况时,可在加第二批之前,先用玻璃棒轻轻搅动第一次沉积的柱床的表面,使其疏松并有部分的悬浮,然后再加入第二批悬浮液。层析柱装好后,用胶头滴管慢慢的吸取柱床上面的溶液。上样前预先用去离子水平衡,再用20mmol/L的NaAc-HAc缓冲液(pH5.5)平衡交换柱,平衡液体积为柱床体积的3-5倍,直至流出液的pH接近5.5。
加样和洗脱:用恒流泵将透析后的原酶液以1.0mL/min的速度加样于交换柱,上样完毕后,用同样的缓冲液(即20mmol/L的NaAC-HAc pH5.5)洗柱。此时的流出液用烧杯收集。大约5h后,待OD280光吸收峰回到基线,用200mL NaAc-HAc (20mmol/L pH5.5)缓冲液和由此缓冲液配制的200mL的0.4mol/L的NaCl对离子交换柱进行洗脱(梯度溶液由梯度混合器获得,NaCl溶液的浓度由低到高)。 洗脱速度为1.0mL/min,用自动部分收集器收集流出液,每3min收集一管,共收集150管。测定流出液的酶活性,合并具有同样酶活性的流出液。
1.5分析方法
1.5.1 锰过氧化物酶的酶活测定
锰过氧化物酶(Manganese (II) peroxidases, MnPs, EC 1.11.1.13)活力的测定:采用Michael的方法。反应混合液含有2940μL {0.1 mol/L乳酸钠缓冲液(pH 4.5)含0.1 mmol/L MnSO4•H2O}和30μL的0.1 mmol/L H2O2,30μL的柱层析所得酶液,反应体系共3mL。反应由加入H2O2而启动(最后再加)。以第一管作对照(因第一管几乎无酶原文请找腾讯752018766辣,文-论'文.网
http://www.751com.cn 活),测定反应前1 min内在240nm处吸光值的增加,定义每分钟使1μmol/L Mn2+氧化成Mn3+所需的酶量作为1个酶活力单位(U)。乳酸与Mn3+所形成的络合物的摩尔消光系数为6,500 M-1 cm-1。
锰过氧化物酶酶活力计算公式如下:
U/L = n × ΔA × 106 / 6,500
其中,n为酶液稀释倍数,ΔA为反应液在1 min内于240nm处吸光值的变化值。
1.5.2 蛋白含量的测定
采用考马斯亮蓝G-250比色法:此法为染料结合法。
以牛血清白蛋白(BSA)为标准液绘制标准曲线。按下面表格中数据加入试剂:
试管编号
操作 空白 标准蛋白质浓度梯度 样品
0 1 2 3 4 5 Ⅰ Ⅱ Ⅲ
BSA标准液(mL) -- 0.1 0.2 0.4 0.6 0.8 -- -- --
样品待测液(mL) -- -- -- -- -- -- 1.0 1.0 1.0
蒸馏水(mL) 1.0 0.9 0.8 0.6 0.4 0.2 -- -- --
考马斯亮蓝染液 各5.0mL
反应 各管混均,室温下放置5min。
比色 以0号管为空白参比,测定λ=595nm处的吸光度。
反映总体积为3mL
2 结果与讨论
2.1 MnP的柱层析纯化结果
结果显示,在150个试管中,只有很少的几个试管能够测到酶活,并且这几个试管的编号不是连在一起的,而其他的测不到酶活,也就是说,通过离子交换层析(Q-Sepharose F. F),没有能够得到具有锰过氧化物酶(MnP)活性的组分。
2.2蛋白含量测定结果
牛血清蛋白含量与光吸收值的关系
BSA含量(μɡ) 10 20 30 40 50
光吸收值(OD595) 0.103 0.211 0.354 0.472 0.5285
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