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微生物复合菌肥对温室黄瓜生长的影响(5)

时间:2017-02-07 13:00来源:毕业论文
(3)750umol/L NBT溶液:称取0.06133g NBT用磷酸缓冲液定容至100mL,现配现用,低温避光保存,可使用2~3d。 (4)100umol/L EDTA-Na2溶液:称取0.003721mg EDTA-Na2用磷酸缓冲液


    (3)750umol/L NBT溶液:称取0.06133g NBT用磷酸缓冲液定容至100mL,现配现用,低温避光保存,可使用2~3d。
    (4)100umol/L EDTA-Na2溶液:称取0.003721mg EDTA-Na2用磷酸缓冲液定容至100mL,低温避光保存,可使用8~10d。
    (5)20umol/L 的核黄素溶液:称取0.00753g核黄素用磷酸缓冲液定容至100mL,低温避光保存,现配现用。
1.5.3.2 操作步骤
    去植物叶片(去叶脉)0.5g于预冷的研钵中,加1mL磷酸缓冲液在冰浴下研磨成匀浆,倒入10mL刻度试管中,加缓冲液定容为5mL。取2mL于离心管中在10000r/min的转速下离心15min,上清液即为SOD提取液。
    每组样品都取8个洁净干燥的试管编号,按表2加入各试剂,反应系统总体积为3mL。试剂全部加入后混匀,将1号置于暗处,其余各杯均与25℃、4000lx日光灯下反应20min,各管受光情况要一致,然后立即遮光停止反应。    
 表3 各杯反应体系加入溶液量
杯号    0.26mol/L
Met(mL)    100umol/L EDTA-Na2(mL)    20umol/L 核黄素(mL)    酶液
(uL)    蒸馏水(mL)
1    0.3    0.3    0.3    0    1.8
2    0.3    0.3    0.3    0    1.8
3    0.3    0.3    0.3    0    1.8
4    0.3    0.3    0.3    5    1.795
5    0.3    0.3    0.3    10    1.79
6    0.3    0.3    0.3    15    1.785
7    0.3    0.3    0.3    20    1.78
8    0.3    0.3    0.3    25    1.775
    在560nm波长下,以一号杯调零,测定其余各杯反应体系的吸光度。以2、3号对照杯OD560的平均值(A1)为参比(NBT被100%还原),分别计算不同酶液量抑制NBT光还原的相对百分率。
1.5.3.3 计算结果
    NBT光化还原的抑制率(%)=[1-(A1-A2)/A1]×100%
    式中:A1---对照杯OD560;A2----加酶杯OD560 。
    以酶液用量(uL)为横坐标,以NBT光化还原的抑制率(%)为纵坐标绘制二者相关曲线。从曲线查得NBT光化还原被抑制50%所需的酶液量(uL),作为一个一个酶活力单位(1U)。
    SOD活性(U•min-1•g-1FW)=(V×1000)/(B×W×t)
    式中:V-酶提取液总量(mL),B为一个酶活力单位的酶液量(uL),W-样品鲜重(g),t-反应时间(min)。
1.5.4 黄瓜幼苗POD活力测定[9-11]
1.5.4.1 试剂
    (1)0.02mol•L-1 KH2PO4溶液:称取0.272g KH2PO4溶解并用蒸馏水定容至100mL。
    (2)0.1mol•L-1 pH6.0磷酸缓冲液:称取0.438g Na2HPO4•2H2O和2.737g NaH2PO4•2H2O用蒸馏水定容到1000mL容量瓶中。
    (3)反应混合液:取0.1mol•L-1 pH6.0磷酸缓冲液50mL,加入愈创木粉0.028mL,加热搅拌,直至愈创木粉溶解,待溶液冷却后,加入30%过氧化氢0.019mL,混合均匀,于冰箱中保存。
1.5.4.2 操作步骤
    称取1.00g洗净的植物叶片,剪碎后放入以冷冻过的研钵中,加入少量石英砂和0.02mol•L-1 KH2PO4溶液5mL,冰浴研磨成匀浆,于4000r•min-1下离心15min,上清液转入25mL容量瓶中。所剩沉淀再用5mL 0.02mol•L-1 KH2PO4溶液提取一次,上清液并入容量瓶中,定容至刻度,保存在冰箱中备用。 微生物复合菌肥对温室黄瓜生长的影响(5):http://www.751com.cn/shengwu/lunwen_2579.html
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