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100ug/ml葡萄糖糖标准液（ml） 0 0.1 0.2 0.4 0.6 0.8 1
蒸馏水（ml） 1.0 0.9 0.8 0.6 0.4 0.2 0
葡萄糖含量（µg） 0 10 20 40 60 80 100
（2）可溶性糖提取：
把构骨叶片放入110℃烘箱烘15min，然后调至70℃过夜。干叶片磨碎后称取50mg样品倒入10ml刻度离心管内加入4ml80%乙醇，置于80℃水浴中不断搅拌40min，离心，收集上清液，其残渣加2ml 80%乙醇重复两遍，合并上清液，在上清液中加10mg活性炭，80℃脱色30min，80%乙醇定容至10ml，过滤后取滤液测定。
（3）显色测定：
吸取上述糖提取液1ml，加入5ml蒽酮试剂混合，用上述同样的方法，在620nm处测得OD值，以0号管调零，由标准曲线查得提取液中的糖含量，然后根据每毫升提取液含有5mg干样品中的糖，再行计算样品中含糖百分比。
第三章 实验结果
一、实验结果
1．植物失水率测定：
图1： 构骨各季节失水率测定
图2： 各植物失水率比较图：2．植物叶面积测定：
图3： 构骨叶面积测定柱状图3．植物相对含水量测定：
图3： 构骨相对含水量柱状图4．植物质膜相对透性测定：
图4： 构骨质膜相对透性柱状图5.植物可溶性糖含量测定：
图5： 构骨可溶性糖含量测定柱状图
二、数据分析：
1．植物叶片失水率：
植物失水率一般来说可以反映出植物的抗旱能力，在单位时间内水分损失的大小，反映叶片持水能力的高低。水分损失越小，其叶片保水能力就越高。[8]故失水率的大小，表示叶片持水能力的高低，失水率越小，其持水能力越高。因为植物水分的流失通常由叶片来承担，故本文的研究对象为构骨的叶片。在自然条件下使构骨叶片自然失水，经过7个半小时后，构骨的叶片的失水率也仅平均为其自身含水量的3%左右。并且，不同时间段的失水速率不同。其中前90分钟失水速率最快，通过图2可以看出，各实验构骨植株在前30分钟失水速率普遍相同，而30分钟之后则可能因为构骨叶片本身面积大小等影响因素存在一定的差异性，但较之之前的90分钟的构骨失水速率都普遍减缓。同时，三次实验中存在明显的失水率差异，是由于在经历了干旱的冬天后，构骨自身逐渐适应了外界的干旱胁迫，于是抗旱性得到了提升，可见在干旱的环境中，构骨能够自身适应缺水环境。综上，可以了解到构骨在干旱的条件下，失水率较慢，拥有较好的持水能力。
2．植物叶面积测定：
植物器官的形态结构是与生理功能和生长环境密切相适应的。植物在水分胁迫下，体内细胞在结构、生理以及生物化学上发生一系列适应性改变，最终要在植物邢台上有所表现。其中叶片的变异性和可塑性最大。叶面积反映了植株水分供应和蒸腾情况，能间接反映干旱时植株的生长情况。更为直观的是，叶片面积的大小在一定程度上直接反映了品种抗旱性强弱。在自然干旱条件下，植物生长细胞分裂较缓，从而导致植物的叶片生长较弱，形成的叶片面积较小，同时也有效的减少了水分的蒸发，使植物更好的适应干旱环境。
本次试验分别在湿度26%、湿度37%和湿度62%的条件下进行，产生数据进行比较。从表3中可以看出，构骨叶片在湿度26%时，平均叶面积为7.77cm2，与湿度37%和湿度62%的条件下的叶面积相比较为较小。可以看出构骨叶片在干旱时，细胞分裂速度转慢，有效的减少了植物蒸腾失水的速度。而通过标准差分析可以看出。构骨在湿度26%的情况下，变化差异最大。而在湿度37%和湿度62%的情况下，构骨叶片的变化相对较为平稳。